DeNovix 自动细胞计数仪应用需聚焦样本处理、参数设置及结果验证,核心是确保计数精准、数据可靠,以下是关键应用要点:
一、样本制备核心要点
细胞悬液制备:确保细胞充分分散,避免团聚。贴壁细胞需用胰酶等试剂温和消化,终止后轻柔吹打 10-15 次;悬浮细胞直接吹打混匀,必要时用 200 目筛网过滤去除杂质和大团聚体。
浓度调节:计数前需将细胞浓度调整至仪器检测范围(通常 1×10⁴ - 1×10⁷ cells/mL)。浓度过高需用对应培养基稀释,过低则可通过离心浓缩,稀释时采用梯度稀释法,保证稀释比例准确。
染色处理(可选):活死细胞区分需使用台盼蓝或 AO/PI 染色液,按 1:1 比例与细胞悬液混合,染色时间控制在 1-5 分钟,避免染色过度影响计数准确性。
二、仪器操作关键规范
样本加载:取 10μL 制备好的细胞悬液,缓慢滴加至计数板中央,避免产生气泡。加载后静置 30 秒,让细胞充分沉降至计数区域,再将计数板放入仪器样品台。
参数设置:根据细胞类型选择对应模板(如哺乳动物细胞、酵母细胞),手动调整细胞直径范围(通常 5-30μm),设置活死细胞判别阈值。若使用自定义染色,需匹配对应荧光通道和激发波长。
重复计数验证:同一批次样本至少进行 3 次平行计数,每次更换新的细胞悬液进行加载,取平均值作为最终结果,减少偶然误差。
三、结果解读与质量控制
数据有效性判断:查看仪器输出的细胞分布图,确保细胞无明显团聚、无边缘堆积,计数区域内细胞数量在 50-500 个之间(数量过少或过多需调整浓度重测)。
异常结果排查:若活细胞率异常偏低,需检查染色液是否失效、细胞是否受到污染或损伤;若计数结果波动过大,需重新制备样本,检查仪器计数板是否清洁。
数据导出与追溯:计数完成后按实验需求导出数据(支持 Excel、PDF 格式),标注样本信息、检测时间及仪器参数,便于实验追溯和数据对比。
四、应用场景适配要点
常规细胞培养监测:适用于贴壁 / 悬浮细胞的浓度监测和活死率评估,可快速反馈细胞生长状态,指导传代、冻存或实验接种时机。
细胞治疗与生物制药:严格遵循 GMP 相关要求,使用校准合格的仪器,定期进行方法学验证,确保细胞计数结果符合临床或生产标准。
微生物计数(部分型号):针对酵母、细菌等微生物,需选择对应检测模块,搭配专用染色液,调整细胞大小阈值,避免与杂质混淆。