allumiqs磁珠凭借高特异性结合、分离快速、纯度高的优势，广泛应用于实验室核酸(DNA/RNA)提取，适配血清、组织、细胞、痰液等多种样品类型，操作流程简洁，可实现高效纯化，以下为标准操作步骤及关键要点。
一、实验前期准备
1. 试剂准备
核心试剂：allumiqs磁珠悬液(使用前充分颠倒混匀，确保磁珠均匀分散)、裂解液、结合液、洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ、洗脱液(无酶水或TE缓冲液)。
试剂预处理：洗涤液需提前确认是否添加无水乙醇(按试剂说明书要求)，所有试剂恢复至室温(20-25℃)，避免温度影响结合效率。
2. 仪器与耗材准备
仪器：磁力架、移液器(10μL、100μL、1000μL)、离心机、恒温水浴锅(可选，用于样品裂解)。
耗材：无酶离心管(1.5mL)、无酶吸头，所有耗材提前灭菌处理，避免核酸污染。
3. 样品准备
根据样品类型处理至均一状态(如组织研磨、细胞裂解)，确保样品充分破碎，释放核酸；避免样品中含有大量杂质、蛋白或强抑制剂(如酚、氯仿)。
二、标准操作步骤
1. 样品裂解(关键步骤)
取处理好的样品(200μL，可按比例调整)加入1.5mL无酶离心管中。
加入200μL裂解液，颠倒混匀10-15次，室温放置5-10min(若为难裂解样品，可置于56℃水浴10min，期间颠倒混匀2-3次)，确保样品完全裂解。
2. 磁珠结合核酸
向裂解后的样品中加入20μL allumiqs磁珠悬液(提前混匀)，再加入200μL结合液，充分颠倒混匀30s，室温静置5min，使核酸与磁珠充分结合。
将离心管置于磁力架上，静置1-2min，待磁珠完全吸附至管壁(溶液澄清)，缓慢吸弃上清液(注意不要触碰磁珠)。
3. 洗涤除杂(两次洗涤，去除杂质)
保持离心管在磁力架上，加入500μL洗涤液Ⅰ，取下离心管，颠倒混匀10次，重新置于磁力架上，静置1min，吸弃上清液。
重复上述操作，加入500μL洗涤液Ⅱ，颠倒混匀10次，磁力架吸附1min，吸弃上清液；用移液器轻轻吸尽管底残留液体(避免损伤磁珠)。
4. 干燥磁珠(避免残留影响洗脱)
保持离心管在磁力架上，开盖室温放置3-5min，直至磁珠完全干燥(无光泽、不粘壁)，切勿过度干燥(否则会导致核酸洗脱效率下降)。
5. 核酸洗脱(核心步骤)
取下离心管，加入30-50μL洗脱液(无酶水或TE缓冲液)，颠倒混匀10-15次，确保磁珠完全悬浮于洗脱液中。
将离心管置于56℃水浴中孵育5min(可选，提升洗脱效率)，期间颠倒混匀1次。
将离心管放回磁力架，静置1-2min，待磁珠完全吸附，缓慢吸取上清液(含纯化核酸)至新的无酶离心管中，即可用于后续实验(PCR、测序等)。
三、关键注意事项
allumiqs磁珠使用前必须充分颠倒混匀，避免磁珠沉淀，影响结合效率；每次加样后需彻底混匀，确保反应充分。
全程使用无酶耗材，操作过程中佩戴手套、口罩，避免人体毛发、皮肤分泌物污染核酸。
洗涤步骤中，上清液需吸弃干净，残留洗涤液会抑制后续实验；干燥磁珠时，不可过度干燥，否则会导致核酸难以洗脱。
洗脱液体积可根据需求调整(30-100μL)，体积越小，核酸浓度越高；洗脱液建议现用现配，避免污染。
提取后的核酸需置于-20℃保存，避免反复冻融；allumiqs磁珠需按说明书要求储存(通常4℃密封保存)，避免阳光直射。
若提取核酸纯度偏低，可增加一次洗涤步骤；若产量偏低，可延长磁珠结合时间或增加磁珠用量。
四、常见问题提示
1. 磁珠吸附不充分：检查磁力架是否正常，或磁珠是否失效；确保结合步骤混匀充分、静置时间足够。
2. 洗脱后无核酸：可能是样品裂解不充分，或磁珠过度干燥，可重新处理样品或调整干燥时间。
3. 核酸纯度低：样品杂质过多，可增加裂解时间或提前去除样品中的蛋白、杂质。
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